基于WGCNA的棉花子叶抗冷相关共表达模块鉴定

doi:10.13304/j.nykjdb.2020.0783

中国农业科技导报 ›› 2022, Vol. 24 ›› Issue (4): 52-62.DOI: 10.13304/j.nykjdb.2020.0783

基于WGCNA的棉花子叶抗冷相关共表达模块鉴定

周雨青¹^,²(), 杨永飞¹^,², 葛常伟², 沈倩², 张思平², 刘绍东², 马慧娟², 陈静², 刘瑞华², 李士丛², 赵新华², 李存东¹(), 庞朝友²()

^1.河北农业大学农学院, 棉花生物学国家重点实验室河北基地, 河北保定 071001
^2.中国农业科学院棉花研究所, 棉花生物学国家重点实验室, 河南安阳 455000

收稿日期:2020-09-07 接受日期:2021-03-03 出版日期:2022-04-15 发布日期:2022-04-20
通讯作者: 李存东,庞朝友
作者简介:周雨青 E-mail： zhouyuqing0803@163.com
基金资助:
中国农业科学院科技创新工程项目(CAAS-ASTIP-2019-ICR)

Identification of Cold-related Co-expression Modules in Cotton Cotyledon by WGCNA

Yuqing ZHOU¹^,²(), Yongfei YANG¹^,², Changwei GE², Qian SHEN², Siping ZHANG², Shaodong LIU², Huijuan MA², Jing CHEN², Ruihua LIU², Shicong LI², Xinhua ZHAO², Cundong LI¹(), Chaoyou PANG²()

^1.Hebei Base of State Key Laboratory of Cotton Biology，College of Agronomy，Hebei Agricultural University，Hebei Baoding 071001，China
^2.State Key Laboratory of Cotton Biology，Institute of Cotton Research，Chinese Academy of Agricultural Sciences，Henan Anyang 455000，China

Received:2020-09-07 Accepted:2021-03-03 Online:2022-04-15 Published:2022-04-20
Contact: Cundong LI,Chaoyou PANG

摘要/Abstract

摘要：

权重基因共表达网络分析（weighted gene co-expression network analysis， WGCNA）是系统生物学的一种研究方法，在多样本转录组数据中挖掘与目标性状相关的基因模块应用较广泛。为深入探究棉花应对冷害胁迫的分子机制，以4 ℃低温处理不同时间点的2个棉花品种（新陆中16和新陆中32）幼苗子叶转录组数据为基础，过滤低表达量基因，最终利用筛选的22 083个表达的基因来构建共表达矩阵，得到9个共表达模块，其中2个为抗冷相关特异性模块（Blue模块与低温处理0、1和3 h时间点正相关，Brown模块与低温处理9和12 h时间点正相关）。GO和KEGG富集分析表明，特异性模块可以富集到对刺激反应的调节（GO：0048583）、对胁迫反应的调节（GO：0080134）、对油菜素类固醇的反应（GO：0009741）等抗逆相关通路。通过计算模块内基因的连通性挖掘网络中的核心基因，功能注释表明这些基因可能在棉花抗冷过程中发挥着重要作用。该结果为进一步研究棉花抗冷调控机理提供数据支持。

关键词: 权重基因共表达网络分析, 棉花, 冷害胁迫, 转录组

Abstract:

Weighted gene co-expression network analysis （WGCNA） is substantially used to identify gene modules related to the trait of interest in multi-sample transcriptome data. Transcriptome data of Xinluzhong 16 and Xinluzhong 32 were assessed to prospect molecular mechanisms under 4 ℃ stress to study the mechnism of cotton’s response to cold stress. Ultimately， the co-expression matrix containing 22 083 expressed genes was fabricated after the genes of low expression level were filtered. And them WGCNA identified 9 modules， among them 2 modules remarkably linked with cold resistance such as brown positively associated with 9 and 12 h， while blue positively associated with 0， 1 and 3 h. KEGG and GO enrichment perusal were evaluated on these 2 modules which could be enriched with GO terms， i.?e. modulation of stress response. Hub genes were screened by estimating gene connectivity in their corresponding networks which might play key roles in abiotic stress resistance. Above results would assist in understanding the regulatory mechanism of cold tolerance in cotton.

Key words: weighted gene co-expression network analysis, cotton, cold stress, transcriptome

中图分类号:

周雨青, 杨永飞, 葛常伟, 沈倩, 张思平, 刘绍东, 马慧娟, 陈静, 刘瑞华, 李士丛, 赵新华, 李存东, 庞朝友. 基于WGCNA的棉花子叶抗冷相关共表达模块鉴定[J]. 中国农业科技导报, 2022, 24(4): 52-62.

Yuqing ZHOU, Yongfei YANG, Changwei GE, Qian SHEN, Siping ZHANG, Shaodong LIU, Huijuan MA, Jing CHEN, Ruihua LIU, Shicong LI, Xinhua ZHAO, Cundong LI, Chaoyou PANG. Identification of Cold-related Co-expression Modules in Cotton Cotyledon by WGCNA[J]. Journal of Agricultural Science and Technology, 2022, 24(4): 52-62.

图/表 13

参考文献 34

1	付小琼，彭军.国家棉花区域试验工作十年回顾与展望［J］.棉花学报，2017，29（S1）：113-117.
	FU X Q， PENG J. Prospect and retrospection of national cotton regional test of China in last decade ［J］. Cotton Sci.， 2017， 29（S1）：113-117.
2	李俊义，王润珍，王宗洪，等.环境条件与棉苗冻害程度研究简报［J］.新疆农垦科技，2000（1）：19.
3	龚双军，李国英，杨德松，等.不同棉花品种苗期抗寒性及其生理指标测定［J］.中国棉花，2005，32（3）：16-17.
	GONG S J， LI G Y， YANG D S， et al.. Determination of cold resistance and physiological indexes of different cotton varieties at seedling stage ［J］. China Cotton， 2005， 32（3）：16-17.
4	秦天元，孙超，毕真真，等.基于WGCNA的马铃薯根系抗旱相关共表达模块鉴定和核心基因发掘［J］.作物学报，2020，46（7）：1033-1051.
	QIN T Y， SUN C， BI Z Z， et al.. Identification of drought-related co-expression modules and hub genes in potato roots based on WGCNA ［J］. Acta Agron. Sin.， 2020， 46（7）：1033-1051.
5	巨飞燕，张思平，刘绍东，等.利用WGCNA进行棉花果枝节间伸长相关基因共表达模块鉴定［J］.棉花学报，2019，31（5）403-413.
	JU F Y， ZHANG S P， LIU S D， et al.. Identification of co-expression modules of genes related to internode elongation of cotton fruiting branches by WGCNA ［J］. Cotton Sci.， 2019， 31（5）403-413.
6	傅明川，李浩，陈义珍，等.利用WGCNA鉴定棉花抗黄萎病相关基因共表达网络［J］.作物学报，2020，46（5）668-679.
	FU M C， LI H， CHEN Y Z， et al.. Identification of co-expressed modules of cotton genes responding to Verticillium dahliae infection by WGCNA ［J］. Acta Agron. Sin.， 2020， 46（5）：668-679.
7	李旭凯，李任建，张宝俊.利用WGCNA鉴定非生物胁迫相关基因共表达网络［J］.作物学报，2019，45（9）1349-1364.
	LI X K， LI R J， ZHANG B J. Identification of rice stress-related gene co-expression modules by WGCNA ［J］. Acta Agron. Sin.， 2019， 45（9）1349-1364.
8	秦梦凡，李浩东，左凯峰，等.利用WGCNA鉴定甘蓝型油菜低温胁迫的基因共表达网络［J］.中国油料作物学报，2020，42（4）554-562.
	QIN M F， LI H D， ZUO K F， et al.. Identification of co-expression networks responding to low-temperature stress by WGCNA in Brassica napus L. ［J］. Chin. J. Oil Crop Sci.， 2020， 42（4）554-562.
9	MORTAZAVI A， WILLIAMS B A， MCCUE K， et al.. Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq ［J］. Nat. Methods， 2008， 5（7）：621-628.
10	LIVAK K J， SCHMITTGEN T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2^-ΔΔCT method ［J］. Methods， 2001， 25（4）：402-408.
11	谢勇军.水稻非生物逆境差异表达基因分析及共表达网络构建［D］.武汉：华中农业大学，2018.
	XIE Y J. Analysis of ifferentially expressed genes and construction of gene co-expression network in rice under abiotic stresses ［D］. Wuhan： Huazhong Agricultural University， 2018.
12	SHARMA N， CRAM D， HUEBERT T， et al.. Exploiting the wild crucifer Thlaspi arvense to identify conserved and novel genes expressed during a plant's response to cold stress ［J］. Plant Mol. Biol.， 2007， 63（2）：171-184.
13	赵娟．反义抑制GhDET2对棉花生长发育的影响［D］.重庆：西南大学，2009.
	ZHAO J. Effects of down-regulation of GhDET2， a steroid 5α-reducase gene of cotton， on the growth and development of cotton （Gossypium hirsutum L．）［D］. Chongqing： Southwest University， 2009.
14	KAZAN K. Negative regulation of defence and stress genes by EAR-motif-containing repressors ［J］. Trends Plant Sci.， 2006， 11（3）：109-112.
15	SAKAMOTO H， MARUYAMA K， SAKUMA Y， et al.. Arabidopsis Cys2/His2-type zinc-finger proteins function as transcription repressors under drought， cold， and high-salinity stress conditions ［J］. Plant Physiol.， 2004， 136（1）：2734-2746.
16	OHTA M， MATSUI K， HIRATSU K， et al.. Repression domains of class Ⅱ ERF transcriptional repressors share an essential motif for active repression ［J］. Plant Cell， 2001， 13（8）：1959-1968.
17	SAKAMOTO H， ARAKI T， MESHI T， et al.. Expression of a subset of the Arabidopsis Cys₂/His₂-type zinc-finger protein gene family under water stress ［J］. Gene，2000，248（1）：23-32.
18	ENGLBRECHT C C， SCHOOF H， BOHM S. Conservation， diversification and expansion of C₂H₂ zinc finger proteins in the Arabidopsis thaliana genome ［J/OL］. BMC Genomics， 2004， 5（1）：39 ［2021-06-21］. .
19	MITTLER R， KIM Y， SONG L， et al.. Gain-and loss-of-function mutations in Zat10 enhance the tolerance of plants to abiotic stress ［J］. FEBS Lett.， 2006， 580（28-29）：6537-6542.
20	ROSSEL J B， WILSON P B， HUSSAIN D， et al.. Systemic and intracellular responses to photooxidative stress in Arabidopsis ［J］. Plant Cell， 2007， 19（12）：4091-4110.
21	NGUYEN X C， KIM S H， LEE K， et al.. Identification of a C2H2-type zinc finger transcription factor （ZAT10） from Arabidopsis as a substrate of MAP kinase ［J］. Plant Cell Rep.，2012， 31（4）：737-745.
22	DROILLARD M， BOUDSOCQ M， BARBIER-BRYGOO H， et al.. Different protein kinase families are activated by osmotic stresses in Arabidopsis thaliana cell suspensions. Involvement of the MAP kinases AtMPK3 and AtMPK6 ［J］. FEBS Lett.， 2002， 527（1-3）：43-50.
23	LIU X M， KIM K E， KIM K C， et al.. Cadmium activates Arabidopsis MPK3 and MPK6 via accumulation of reactive oxygen species ［J］. Phytochemistry， 2010， 71（56）：614-618.
24	NAKAGAMI H， PITZSCHKE A， HIRT H. Emerging MAP kinase pathways in plant stress signalling ［J］. Trends Plant Sci.， 2005， 10（7）：339-346.
25	SAMUEL M A， MILES G P， ELLIS B E. Ozone treatment rapidly activates MAP kinase signalling in plants ［J］. Plant J．， 2000， 22（4）：367-376.
26	TENA G， ASAI T， CHIU W L， et al.. Plant mitogen-activated protein kinase signaling cascades ［J］. Curr. Opin. Plant Biol.， 2001， 4（5）：392-400.
27	YUASA T， ICHIMURA K， MIZOGUCHI T， et al.. Oxidative stress activates ATMPK6， an Arabidopsis homologue of MAP kinase ［J］. Plant Cell Physiol.， 2001， 42（9）：1012-1016.
28	张丽丽，李景富，王傲雪.转录激活因子CBF基因在植物抗冷分子机制中的作用［J］.园艺学报，2008，35（5）：765-771.
	ZHANG L L， LI J F， WANG A X. The role of the transcription factor CBF genes in cold-responsive molecular mechanism ［J］. Acta Hortic. Sin.， 2008， 35（5）：765-771.
29	CAI X， MAGWANGA R O， XU Y， et al.. Comparative transcriptome， physiological and biochemical analyses reveal response mechanism mediated by CBF4 and ICE2 in enhancing cold stress tolerance in Gossypium thurberi ［J］. AoB Plants， 2019：1-17.
30	HAAKE V， COOK D， RIECHMANN J L， et al.. Transcription factor CBF4 is a regulator of drought adaptation in Arabidopsis ［J］. Plant Physiol.， 2002， 130（2）：639-648.
31	CHAWADE A， BRAUTIGAM M， LINDLOF A， et al.. Putative cold acclimation pathways in Arabidopsis thaliana identified by a combined analysis of mRNA co-expression patterns， promoter motifs and transcription factors ［J］. BMC Genomics， 2007， 8（1）：304.
32	SEO P J， KIM M J， PARK J Y， et al.. Cold activation of a plasma membrane-tethered NAC transcription factor induces a pathogen resistance response in Arabidopsis ［J］. Plant J．， 2010， 61（4）：661-671.
33	BOZOVIC V， SVENSSON J， SCHMITT J， et al.. Dehydrins （LTI29， LTI30， COR47） from Arabidopsis thaliana expressed in Escherichia coli protect thylakoid membrane during freezing ［J］. J. Serb. Chem. Soc.， 2013， 78（8）：1149-1160.
34	HERNANDEZ-SANCHEZ I E， MARURI-LOPEZ I， GRAETHER S P， et al.. In vivo evidence for homo-and heterodimeric interactions of Arabidopsis thaliana dehydrins AtCOR 47， AtERD10， and AtRAB18 ［J/OL］. Sci. Rep.， 2019， 7（1）：17036 ［2021-06-21］. .

基因 ID Gene ID	正向引物 Forward primer （5'-3'）	反向引物 Reverse primer（5'-3'）
Gh_A11G0969	GAAGGCATTCCACCTGACCAAC	CTTGACCTTCTTCTTCTTGTGCTTG
Gh_A05G1931	TGCCCAATGGTGGAAAACCACT	CGGCTCATGCAGAACCCTTCAA
Gh_D13G0160	CGAACATGATGCCAACCGATGC	TGCAATCGAGCTTCCGTAGGTG
Gh_A13G2112	CCACAAGAGTTTCCCTACGGGC	CGTGGTTTCTTGGTCGGCAATG
Gh_A05G0483	GCCGAGTGTGAGGATTATGCCA	TTCTTGACGGGACAACTTGGGG
Gh_A12G2357	CGTGGCAGCTATAGCACTGA	TTCTGAAAGTCTCCGCCACC
Gh_D09G1773	AATAGGGCTACCGAGGCTGGTT	AGCCCTCCCGTTGTAAAACACC
Gh_D05G2642	GCAGCAACCCCAAAATCCCAAC	CCACATCCCCGTATTCAGCACC
Gh_A05G1554	GCCTCAAGAGGAGGTGATCG	GCTGCTGCTATCTGATCGGT
Gh_D05G0600	AAGGGCTTACGTCCGCACAAAT	GCACTTGAAGTATGCCCTCGGA
Gh_A13G0138	AGGGTGCATGTCCTAAGGGTGA	GACCTCGGTGAAGGCATAGCAG

基因 ID Gene ID	正向引物 Forward primer （5'-3'）	反向引物 Reverse primer（5'-3'）
Gh_A11G0969	GAAGGCATTCCACCTGACCAAC	CTTGACCTTCTTCTTCTTGTGCTTG
Gh_A05G1931	TGCCCAATGGTGGAAAACCACT	CGGCTCATGCAGAACCCTTCAA
Gh_D13G0160	CGAACATGATGCCAACCGATGC	TGCAATCGAGCTTCCGTAGGTG
Gh_A13G2112	CCACAAGAGTTTCCCTACGGGC	CGTGGTTTCTTGGTCGGCAATG
Gh_A05G0483	GCCGAGTGTGAGGATTATGCCA	TTCTTGACGGGACAACTTGGGG
Gh_A12G2357	CGTGGCAGCTATAGCACTGA	TTCTGAAAGTCTCCGCCACC
Gh_D09G1773	AATAGGGCTACCGAGGCTGGTT	AGCCCTCCCGTTGTAAAACACC
Gh_D05G2642	GCAGCAACCCCAAAATCCCAAC	CCACATCCCCGTATTCAGCACC
Gh_A05G1554	GCCTCAAGAGGAGGTGATCG	GCTGCTGCTATCTGATCGGT
Gh_D05G0600	AAGGGCTTACGTCCGCACAAAT	GCACTTGAAGTATGCCCTCGGA
Gh_A13G0138	AGGGTGCATGTCCTAAGGGTGA	GACCTCGGTGAAGGCATAGCAG

模块 Module	GO条目 GO term	基因本体 Ontology	描述 Description	基因数目 Genes No.	P值 P value
蓝色 Blue	GO：0048583	P	对刺激反应的调节Regulation of response to stimulus	538	0.001 08
	GO：0080134	P	对胁迫反应的调节Regulation of response to stress	282	0.000 45
	GO：0031347P	P	对防御反应的调节Regulation of defense response	216	0.000 15
	GO：0009738	P	脱落酸激活的信号通路 Abscisic acid-activated signaling pathway	216	0.000 32
	GO：0010200	P	对几丁质的反应Response to chitin	166	0.000 15
	GO：0009741	P	对油菜素类固醇的反应Response to brassinosteroid	114	0.001 47
	GO：0003700	F	转录因子活性，特异性DNA序列结合 Transcription factor activity， sequence-specific DNA binding	1 275	0.000 68
	GO：0005623	C	细胞Cell	12 853	1.05e-06
	GO：0043227	C	膜结合细胞器Membrane-bounded organelle	10 326	7.51e-06

模块 Module	GO条目 GO term	基因本体 Ontology	描述 Description	基因数目 Genes No.	P值 P value
蓝色 Blue	GO：0048583	P	对刺激反应的调节Regulation of response to stimulus	538	0.001 08
	GO：0080134	P	对胁迫反应的调节Regulation of response to stress	282	0.000 45
	GO：0031347P	P	对防御反应的调节Regulation of defense response	216	0.000 15
	GO：0009738	P	脱落酸激活的信号通路 Abscisic acid-activated signaling pathway	216	0.000 32
	GO：0010200	P	对几丁质的反应Response to chitin	166	0.000 15
	GO：0009741	P	对油菜素类固醇的反应Response to brassinosteroid	114	0.001 47
	GO：0003700	F	转录因子活性，特异性DNA序列结合 Transcription factor activity， sequence-specific DNA binding	1 275	0.000 68
	GO：0005623	C	细胞Cell	12 853	1.05e-06
	GO：0043227	C	膜结合细胞器Membrane-bounded organelle	10 326	7.51e-06

模块 Module	核心基因编号 Hub gene ID	模块内连通性 Connectivity	拟南芥同源基因编号 Homologous gene ID in A. thaliana	基因功能 Gene function
蓝色Blue	Gh_A05G1931	4 300.865	AT4G08950	磷酸盐反应1家族蛋白 Phosphate-responsive 1 family protein
	Gh_D13G0160	4 218.162	AT2G40140	锌指（C₃H型）蛋白家族 Zinc finger （C₃H-type） family protein
	Gh_A13G2112	3 944.263	AT1G27730	耐盐锌指Salt tolerance zinc finger
	Gh_A05G0483	3 864.472	AT1G80840	WRKY DNA结合蛋白40 WRKY DNA-binding protein 40
	Gh_A12G2357	3 096.27	AT5G51990	C重复结合因子4 C-repeat-binding factor 4
棕色 Brown	Gh_D09G1773	628.545	AT3G49530	含有NAC结构域的蛋白质62 NAC domain containing protein 62
	Gh_D05G2642	601.582	AT3G56400	WRKY DNA结合蛋白70 WRKY DNA-binding protein 70
	Gh_A05G1554	557.708	AT1G20440	低温调节47 Cold-regulated 47
	Gh_D05G0600	550.86	AT1G80840	WRKY DNA结合蛋白40 WRKY DNA-binding protein 40
	Gh_A13G0138	517.077	AT2G40140	锌指（C₃H型）蛋白家族 Zinc finger （C₃H-type） family protein 图8　核心基因的表达模式 Fig.8　Expression pattern of hub genes 图9　核心基因的 RT－qPCR 验证 Fig.9　qRT－PCR validation of hub genes

基于WGCNA的棉花子叶抗冷相关共表达模块鉴定

Identification of Cold-related Co-expression Modules in Cotton Cotyledon by WGCNA

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模块 Module	GO条目 GO term	基因本体 Ontology	描述 Description	基因数目 Genes No.	P值 P value
棕色 Brown	GO：0050896	P	对刺激的反应Response to stimulus	644	6.16e-10
	GO：0006950	P	对胁迫的反应Response to stress	365	1.39e-05
	GO：0009719	P	对内源性刺激的反应Response to endogenous stimulus	269	7.26e-14
	GO：0009628	P	对非生物刺激的反应Response to abiotic stimulus	263	2.57e-07
	GO：1901700	P	对含氧化合物的反应Response to oxygen-containing compound	253	3.61e-14
	GO：0009725	P	对激素的反应Response to hormone	233	1.08e-08
	GO：0048583	P	对刺激反应的调节Regulation of response to stimulus	106	3.83e-08
	GO：0009737	P	对脱落酸的反应Response to abscisic acid	103	3.37e-08
	GO：0009723	P	对乙烯的反应Response to ethylene	68	6.83e-08
	GO：0080134	P	对胁迫反应的调节Regulation of response to stress	66	3.94e-09
	GO：0010200	P	对几丁质的反应Response to chitin	64	2.87e-20
	GO：0009751	P	对水杨酸的反应Response to salicylic acid	47	4.46e-08
	GO：0031347	P	对防御反应的调节Regulation of defense response	47	1.41e-06
	GO：0009753	P	对茉莉酸的反应Response to jasmonic acid	46	2.71e-05
	GO：0003700	F	转录因子活性，特异性DNA序列结合 Transcription factor activity， sequence-specific DNA binding	262	3.74e-20
	GO：0005634	C	核nucleus	797	1.94e-06
	GO：0005887	C	质膜的组成部分Integral component of plasma membrane	24	0.024 88

[1]	贾浩, 王洪这, 孙正文, 谷淇深, 张冬梅, 王星懿, 张艳, 卢怀玉, 马峙英, 王省芬. 棉花VOZ基因家族鉴定及GhVOZ1耐盐功能研究[J]. 中国农业科技导报, 2025, 27(9): 58-68.
[2]	史硕, 冯宇, 李亮, 孟瑞, 章延泽, 杨秀荣. 印度梨形孢介导小麦抗纹枯病的转录组分析及关键基因筛选[J]. 中国农业科技导报, 2025, 27(5): 133-145.
[3]	王昕昕, 吴子薇, 方婷, 牟巧, 王芳, 赵晗, 杜志强, 杨彩侠. 维生素C调节小鼠TM4支持细胞的功能和基因表达[J]. 中国农业科技导报, 2025, 27(5): 81-89.
[4]	陈宜新, 杨秀波, 田士军, 王聪, 白志英, 李存东, 张科. 陆地棉GhCOMT28对干旱胁迫的响应[J]. 中国农业科技导报, 2025, 27(4): 45-56.
[5]	董志多, 付秋萍, 黄建, 祁通, 付彦博, 开赛尔·库尔班. 新疆棉花萌发期的耐盐能力分析[J]. 中国农业科技导报, 2025, 27(4): 57-67.
[6]	彭梓程, 杜洪力, 王铭, 张凤华, 杨海昌. 丛枝菌根真菌调控盐碱胁迫下棉花生长及离子平衡的研究[J]. 中国农业科技导报, 2025, 27(2): 33-41.
[7]	翁慧婷, 刘海洋, 郭惠明, 程红梅, 李君, 张超, 苏晓峰. 棉花抗黄萎病相关基因GhERF020功能的初步分析[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(9): 112-121.
[8]	李紫琴, 王家强, 李贞, 邹德秋, 张小功, 罗霄玉, 柳维扬. 基于光谱指数的棉花叶片叶绿素密度估算研究[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(8): 103-111.
[9]	张倩, 门丽娜, 李一然, 刘巧, 胡晓雯, 张宇宏, 张志伟, 张伟. 桃蛀果蛾雌雄虫不同发育时期嗅觉基因的表达水平差异[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(8): 151-162.
[10]	庞博, 李生梅, 李彦霖, 杨涛, 梁维维, 张茹, 黄雅婕, 任丹, 崔进鑫, 李静, 马晶晶, 高文伟. 192份陆地棉杂交种的遗传多样性分析[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(8): 34-50.
[11]	秦宇坤, 陈俊英, 张丽娟. 赣北棉区棉花干物质积累特征和产量对减氮措施的响应[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(6): 191-199.
[12]	鲁一薇, 夏雪岩, 赵宇, 崔纪菡, 刘猛, 黄玫红, 褚程, 刘建军, 李顺国. 缺钾胁迫下谷子转录组分析及相关基因挖掘[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(6): 30-44.
[13]	徐佳睿, 王逸茹, 赵绍赓, 李坤, 郑军. 玉米木质素合成途径基因ZmCCoAOMT1功能研究及转录组分析[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(5): 30-43.
[14]	李江博, 高文举, 运晓东, 赵杰银, 耿世伟, 韩春斌, 陈全家, 陈琴. 不同水分胁迫处理对陆地棉核心种质资源的影响[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(3): 26-39.
[15]	李双, 王爱英, 焦浈, 池青, 孙昊, 焦涛. 盐胁迫下不同抗性小麦幼苗生理生化特性及转录组分析[J]. 中国农业科技导报, 2024, 26(2): 20-32.